UNIVERSITA' DEGLI STUDI DI PERUGIA
FACOLTA' DI Facolta' di Scienze Matematiche Fisiche e Naturali
Laurea specialistica
- LS45
- scienze molecolari biomediche
Sede di Perugia
|
ELENCO DEGLI INSEGNAMENTI E DELLE ALTRE ATTIVITÀ FORMATIVE |
| ANNO |
PERIODO |
DISCIPLINA |
DOCENTE |
ORE
TEOR. + PRAT. |
CFU |
| A Scelta |
II semestre
|
Aerobiologia - Areobiologia |
Prof.
MINCIGRUCCI
Gianfranco
|
24 + 0 |
3 |
| 1 |
I semestre
|
Anatomia Umana
|
Dott.
ARCURI
Cataldo
|
40 + 0 |
5 |
| 1 |
II semestre
|
Biochimica Applicata e Biologia Molecolare II - Biochimica Applicata e Biologia Molecolare II Mod1 |
Prof.
ORLACCHIO
Aldo
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16 + 0 |
2 |
| 1 |
II semestre
|
Biochimica Applicata e Biologia Molecolare II - Biochimica Applicata e Biologia Molecolare II Mod2 |
Dott.ssa
TANCINI
Brunella
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16 + 10 |
3 |
| 1 |
II semestre
|
Biochimica Applicata e Biologia Molecolare II - Biochimica Applicata e Biologia Molecolare II Mod3 |
Dott.ssa
MARTINO
Sabata
|
40 + 10 |
6 |
| 2 |
I semestre
|
Biochimica Clinica e Biotecnologie cellulari e molecolari - Biochimica Clinica e Biotecnologie cellulari e molecolari Mod 1 |
Dott.ssa
SACCARDI
Carla
|
24 + 30 |
6 |
| 2 |
I semestre
|
Biochimica Clinica e Biotecnologie cellulari e molecolari - Biochimica Clinica e Biotecnologie cellulari e molecolari Mod 2 |
Dott.ssa
FALZETTI
Franca
|
16 + 0 |
2 |
| A Scelta |
II semestre
|
Bioeconomia il sistema uomo come modello
|
Prof.
DONATO
Rosario Francesco
|
24 + 0 |
3 |
| A Scelta |
II semestre
|
Biologia Teorica
|
Prof.
CIROTTO
Carlo
|
24 + 0 |
3 |
| 1 |
I semestre
|
Chimica Fisica delle Biomolecole
|
Prof.ssa
LATTERINI
Loredana
|
24 + 0 |
3 |
| A Scelta |
I semestre
|
Elettrofisiologia
|
Dott.
CATACUZZENO
Luigi
|
24 + 0 |
3 |
| 1 |
II semestre
|
Fisiologia, Patologia ed Epidemiologia - Fisiologia, Patologia ed Epidemiologia Mod 1 |
Prof.
GIANFRANCESCHI
Luigi
|
32 + 0 |
4 |
| 1 |
II semestre
|
Fisiologia, Patologia ed Epidemiologia - Fisiologia, Patologia ed Epidemiologia Mod 2 |
Prof.
GRIGNANI
Francesco
|
32 + 0 |
4 |
| 1 |
II semestre
|
Fisiologia, Patologia ed Epidemiologia - Fisiologia, Patologia ed Epidemiologia Mod 3 |
Dott.
FABIANI
Roberto
|
32 + 0 |
4 |
| 1 |
II semestre
|
Fotochimica e Fotobiologia
|
Dott.
GENTILI
Pier Luigi
|
32 + 0 |
4 |
| A Scelta |
II semestre
|
Genetica dei Microrganismi
|
Dott.ssa
LANFALONI
Luisa
|
24 + 0 |
3 |
| 1 |
I semestre
|
Genetica Molecolare - Genetica Molecolare Mod1 |
Dott.ssa
LANFALONI
Luisa
|
40 + 0 |
5 |
| 1 |
I semestre
|
Genetica Molecolare - Genetica Molecolare Mod2 |
Dott.ssa
MICHELI
Maria Rita
|
40 + 0 |
5 |
| 1 |
I semestre
|
Immunologia
|
Dott.ssa
NERI
Mariella
|
40 + 0 |
5 |
| A Scelta |
II semestre
|
Microbiologia Molecolare Applicata
|
Dott.
FEDERICI
Ermanno
|
24 + 0 |
3 |
| 1 |
II semestre
|
Modelli Matematici e Statistici
|
Dott.ssa
SALVATORI
Maria Cesarina
|
16 + 20 |
4 |
| A Scelta |
I semestre
|
Neurobiologia
|
Dott.ssa
CASTIGLI
Emilia
|
24 + 0 |
3 |
| A Scelta |
II semestre
|
Principi di genomica umana
|
Dott.ssa
MICHELI
Maria Rita
|
24 + 0 |
3 |
| 2 |
I semestre
|
Virologia molecolare e clinica
|
Prof.ssa
IORIO
Anna Maria
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64 + 0 |
8 |
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PROGRAMMI DEI CORSI |
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Aerobiologia - Areobiologia |
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(Docente:
Prof.
MINCIGRUCCI
Gianfranco)
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Periodo didattico:
II semestre
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Programma:
L'atmosfera e le particelle vegetali presenti in essa (alghe, spore di
funghi, di felci, di muschi e pollini di Spermatofite). Inquadramento
sistematico dei principali gruppi vegetali a diffusione anemofila del
polline. Riconoscimento delle piante arboree, arbustive ed erbacee
responsabili della liberazione di pollini allergogeni. Fasi
fenologiche. Fonti di produzione delle particelle aerodiffuse.
Dimensioni delle particelle aerodiffuse. Modalità di diffusione e
trasporto. Influenza delle condizioni atmosferiche. Effetti in ambienti
confinati (indoor) ed esterni (outdoor) sugli esseri umani, sugli
animali e sulle piante (patologia umana, animale e vegetale) e sui beni
culturali, artistici e monumentali. Implicazioni allergologiche con
particolare riferimento alle pollinosi. Pollinosi nuove ed emergenti
(nocciolo, cipresso, ambrosia ecc.). Pollinosi e relazione con il verde
urbano ornamentale e spontaneo. Principi di morfologia pollinica e
chiavi di identificazione. Tecniche di monitoraggio aerobiologico dei
pollini e delle spore aerodisperse.
Allestimento ed analisi dei campioni di monitoraggio. Calendari di pollinazione per famiglie, generi, specie.
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Modalità di Esame:
Esame orale
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Orario di Ricevimento:
Martedì, Mercoledì, Giovedì - ore 11-13
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Testi Consigliati:
MINCIGRUCCI G., BRICCHI E., "Aerobiologia" (Dispense e DVD gratuiti)
BARONI E., Guida Botanica d'Italia, Ed. Cappelli, Bologna
GEROLA F.M., Biologia e diversità dei vegetali, UTET, Torino
STRASBURGER E., Trattato di Botanica, Parte sistematica, Ed. Delfino, Roma.
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Anatomia Umana
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(Docente:
Dott.
ARCURI
Cataldo)
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Periodo didattico:
I semestre
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Programma:
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Modalità di Esame:
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Orario di Ricevimento:
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Testi Consigliati:
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Biochimica Applicata e Biologia Molecolare II - Biochimica Applicata e Biologia Molecolare II Mod1 |
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(Docente:
Prof.
ORLACCHIO
Aldo)
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Periodo didattico:
II semestre
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Programma:
Cellule e tessuti utilizzati in Biochimica. Analisi biochimica dei
componenti cellulari. Frazionamento subcellulare. Lavorando con le
proteine: estrazione, strategia di purificazione di una proteina,
scelta metodi separativi: analitici e preparativi.Metodi di
purificazione basati sulla solubilità.Denaturazione proteica.Dialisi.
Metodi centrifugativi. Metodi cromatografici: scambio ionico, gel
filtrazione, interazione idrofobica,affinità. Criteri di
purezza.Determinazione del peso molecolare delle proteine. Metodi
immunologici di caratterizzazione delle proteine. Elettroforesi in
condizioni native e denaturanti. Elettroforesi
bidimensionale.Proteomica e applicazioni nella diagnostica molecolare.
Determinazione della struttura primaria delle
proteine.Frammentazione enzimatica e chimica delle proteine.
Separazione dei peptidi. Determinazione dei residui NH2-terminali e
COOH terminali. Reazione di Edman, spettrometria di massa.
Sovrapposizione dei peptidi. Sintesi di piccoli peptidi con metodi
chimici. Proteine ricombinanti e loro applicazioni terapeutiche.
Denaturazione e ripiegamento delle proteine. La degradazione
delle proteine tramite la il meccanismo dell'ubiquitina-proteasoma. Il
ripiegamento non corretto delle proteine (le amiloidosi e le malattie
prioniche). Glicosamminoglicani e glicoproteine, importanza biologica.
Uso delle lectine nello studio delle glicoproteine. Malattie genetiche
da accumulo lisosomiale.Seminari specialistici e visita guidata presso
i Laboratori di ricerca biomedici.
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Modalità di Esame:
Esame
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Orario di Ricevimento:
11.00-13.00 da Lunedì a Venerdì
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Testi Consigliati:
-H.J. Ninfa , D.P: Ballau, Metodologie di Base per la Biochimica e la Biotecnologia. Zanichelli Editore.
-Nelson D.L. e Cox M.M., Principi di Biochimica di A.L. Lehninger, , Zanichelli Editore.
-Materiale didattico su CD.
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Biochimica Applicata e Biologia Molecolare II - Biochimica Applicata e Biologia Molecolare II Mod2 |
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(Docente:
Dott.ssa
TANCINI
Brunella)
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Periodo didattico:
II semestre
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Programma:
Aspetti generali sulla struttura e funzione degli enzimi. Cinetica
enzimatica. Metodi di determinazione dell'attività enzimatica.Impiego
di enzimi in diagnostica.Terapia enzimatico-sostitutiva.Applicazione
industriale di enzimi. Immobilizzazione di enzimi. Esercitazioni
pratiche: determinazione della concentrazione proteica in un campione
biologico; determinazione della Km e Vmax di un enzima; SDS-PAGE. |
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Modalità di Esame:
Esame orale
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Orario di Ricevimento:
giovedi 15,30-17,30
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Testi Consigliati:
Nelson DL, Cox MM, I Principi di Biochimica di Lehninger, 3a edizione, Zanichelli;
H.J.NINFA, D.P. BALLAOU, Metodologie di Base per la Biochimica e la
Biotecnologia. -Zanichelli Editore; R.Verga, M.S.Pilone, Biochimica
industriale, Casa Editrice Sprinter |
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Biochimica Applicata e Biologia Molecolare II - Biochimica Applicata e Biologia Molecolare II Mod3 |
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(Docente:
Dott.ssa
MARTINO
Sabata)
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Periodo didattico:
II semestre
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Programma:
Dalla gnomica alla post-genomica funzionale: le nuove tecnologie per
studiare la relazione gene-proteina. Meccanismi molecolari delle
malattie genetiche. Biologia molecolare nella diagnosi delle malattie
genetiche. Produzione e importanza dei modelli animali e cellulari.
Strategie di cura delle malattie genetiche. Terapia genica; Terapia
cellulare Farmacogenomica. RNA interference e MicroRNA: meccanismo
molecolare- Combinazione terapia genica-RNA interferenza Meccanismi
genetici ed epigenetici come base della regolazione del
differenziamento cellulare. Differenziamento cellulare: 1- maturazione
a partire dalle cellule staminali. Differenziamento delle cellule
staminali del sistema emopoietico: es. differenziamento linfociti T e
linfociti B; Differenziamento delle cellule staminali dell'epidermide.
Differenziamento delle cellule staminali del sistema nervoso: es.
differenziamento degli oligodendrociti e astrociti). Fenomeno della
plasticità cellulare. Differenziamento cellulare: 2- ciclo cellulare .
meccanismo molecolare del dei punti di controllo sul ciclo cellulare.
Eventi molecolari che determinano la specificazione cellulare. Geni
HOX. Apoptosi (causa e meccanismo molecolare). Invecchiamento (causa e
meccanismo). Ibridizzazione in situ. Analisi tramite Facs. Two hybrid
System. Gene Testing, Microarrays. Real time PCR.
Esercitazioni pratiche su: trasfeszionei, Real Time PCR, Immunocitochimica.
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Modalità di Esame:
Esame orale
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Orario di Ricevimento:
Lunedì-Giovedì 14.00-15.00
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Testi Consigliati:
IL gene VIII-LEWIN Benjamin
Biologia Molecolare della Cellula-ALBERTS Bruce , JOHNSON Alexander
, LEWIS Julian , RAFF Martin , ROBERTS Keith , WALTER Peter .
Materiale didattico fornito dal docente
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Biochimica Clinica e Biotecnologie cellulari e molecolari - Biochimica
Clinica e Biotecnologie cellulari e molecolari Mod 1 |
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(Docente:
Dott.ssa
SACCARDI
Carla)
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Periodo didattico:
I semestre
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Programma:
Emocromocitometria, parametri e valori fisiologici e patologici,
tecniche di acquisizione. Metabolismo del ferro, proteine vettrici e di
deposito, analiti e parametri di valutazione. Anemia: definizione e
classificazioni. Diagnostica di laboratorio differenziale. Anemie
ferrocarenziali, anemie megaloblastiche, anemie emolitiche,
emoglobinopatie, talassemie. Fisiologia della emo coagulazione e della
fibrinolisi: principali test di valutazione laboratoristica.
Sieroproteine significato clinico e diagnostica elettrforetica.
elettroforesi zonale, capillare, elettrosintesi, immunodiffusione
radiale, elettroimmunodiffusione, immunoelettroforesi. Enzimi in
diagnostica, enzimi di sortita, enzimi di sintesi. Enzimi markers
epatici, cardiaci, prostatici, ossei. Mioglobina, tropronine. Omeostasi
glicidica, glicemia basale, curve da carico e da stimolazione,
insulina, peptide C, clamping insulina-glucosio, emoglobine
glicosilate, corpi chetonici. Lipidogramma ( valori lipidici ematici
fisiologici e patologici)e fattori di rischio nella malattia
aterosclerotica. Diagnostica epatica di laboratorio:indici di citolisi,
di colestasi, di deficit parenchimale, di reazione mesenchimale, di
shunt circolatorio;diagnostica differenziale degli itteri. Analisi del
liquido seminale, spermiogramma, reazione acrosomiale. Ves.
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Modalità di Esame:
esame orale
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Orario di Ricevimento:
mercoledì 16.00-18.00
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Testi Consigliati:
G.Federici et all.Medicina di laboratorio. 2° ed. McGrow-Hill ed.
M.Zatti et all. Medicina Laboratorio. Idelson-Gnocchi ed. Biochimica
Clinica, L. Spandrio. Ed. Sorbona, Milano.
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Biochimica Clinica e Biotecnologie cellulari e molecolari - Biochimica
Clinica e Biotecnologie cellulari e molecolari Mod 2 |
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(Docente:
Dott.ssa
FALZETTI
Franca)
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Periodo didattico:
I semestre
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Propedeuticità:
no
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Programma:
) sistema emopoietico: anatomia, fattori di crescita, meccanismi di differenziazione, controllo molecolare
dell'emopoiesi, linee cellulari normali e neoplastiche. b) microambiente midollare: anatomia, regolazione. c)
patogenesi cellulare e molecolare delle malattie del sangue: meccanismi patogenetici delle malattie
ematologiche ereditarie, patogenesi cellulare e molecolare delle emopatie maligne. d) manipolazione delle
cellule staminali: trapianto di midollo osseo, ingegnerizzazione delle cellule staminali emopoietiche.
Esercitazioni pratiche: colture cellulari emopoietiche, citofluorimetria, metodologie di transfezione genica,
ingegnerizzazione delle cellule staminali emopoietiche e mesenchimali e delle cellule somatiche. Metodi di
valutazione delle cellule ingegnerizzate.
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Modalità di Esame:
esame
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Orario di Ricevimento:
lunedì 15-17, ogni altro giorno previo appuntamento via e-mail
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Testi Consigliati:
consultare il docente
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Bioeconomia il sistema uomo come modello
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(Docente:
Prof.
DONATO
Rosario Francesco)
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Periodo didattico:
II semestre
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Programma:
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Modalità di Esame:
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Orario di Ricevimento:
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Testi Consigliati:
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Biologia Teorica
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(Docente:
Prof.
CIROTTO
Carlo)
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Periodo didattico:
II semestre
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Programma:
Biologia teorica: definizione e cenni storici. Nozioni epistemologiche
di base. Il metodo scientifico. La questione dell'origine della vita.
L'evoluzione del vivente. Il Neodarwinismo.
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Modalità di Esame:
Esame
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Orario di Ricevimento:
lunedì, martedì, mercoledì - ore 13 - 14
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Testi Consigliati:
I testi verranno consigliati dal docente
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Chimica Fisica delle Biomolecole
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(Docente:
Prof.ssa
LATTERINI
Loredana)
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Periodo didattico:
I semestre
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Programma:
Fondamenti di quantistica e spettroscopia, assorbimento della
radiazione elettromagnetica, spettroscopia infrarossa e UV-Vis,
dicroismo circolare.
Analisi di dati spettroscopici basata su modelli di interazione tra macromolecole biologiche e ligandi.
Cinetica di reazione, legge di velocità; catalisi; cinetiche veloci in soluzione.
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Modalità di Esame:
Esame orale
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Orario di Ricevimento:
Venerdì 11.00-13.00
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Testi Consigliati:
Consultare il docente
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Elettrofisiologia
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(Docente:
Dott.
CATACUZZENO
Luigi)
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Periodo didattico:
I semestre
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Programma:
Definizione di canale ionico. Struttura dei canali ionici: il recettore
nicotinico e gli altri canali ligando attivati; canali
voltaggio-attivati; plot di idropaticita?; predizione della topologia
transmembrana; risultati ottenuti con l?analisi cristallografica. La
tecnica del patch-clamp: proprieta? e utilizzo delle configurazioni
whole-cell, inside-out e outside-out.
Meccanismi di apertura e chiusura dei canali ionici (gating);
transizioni conformazionali dei canali; istogrammi di durata delle
aperture e delle chiusure; la teoria dello stato di transizione;
molteplicita? di stati energeticamente distinguibili. Definizione e
modalita? di misura della probabilita? di apertura di un canale. Basi
strutturali del gating: esperimenti indiretti tramite utilizzo di
ammonio quaternari; esperimenti con metantiosulfonato; risultati della
cristallografia ai raggi X.
Gating voltaggio-dipendente: relazione probabilita? di
apertura-voltaggio ed equazione di Boltzmann; ipotesi del sensore del
voltaggio; derivazione dell?equazione di Boltzmann. Basi molecolari del
sensore del voltaggio: il segmento S4; esperimenti di sostituzione
aminoacidica sul segmento S4; esperimenti di accessibilita? del
segmento S4 alle soluzioni intra- ed extracellulari.
Cinetica di attivazione dei canali ionici: ensemble average e
correnti macroscopiche. Schema cinetico del canale K DRK e sua
interpretazione fisica; Inattivazione e sua base molecolare:
esperimenti con proteasi intracellulari e delezione della porzione
aminiterminale dei canali K Shaker. Gating ligando-dipendente:
relazione probabilita? di apertura ? concentrazione di agonista ed
equazione di Hill. Basi molecolari della sensibilita? al Ca dei canali
K di tipo BK.
Sistematica dei canali ionici. Canali Na: struttura e tipologie di
canali Na voltaggio-dipendenti; canali Na voltaggio-indipendenti
(epiteliali). Canali Ca: struttura e tipologie dei canali Ca
voltaggio-dipendenti; canali di rilascio del Ca dai depositi
intracellulari. Canali K: struttura e tipologie dei canali K
voltaggio-dipendenti; canali K Ca-attivati; canali K rettificatori
interni; canali K background. I canali Cl. Struttura e tipologie dei
canali ligando-dipendenti: recettori nicotinici; recettori GABA e
glicina; recettori canale per la serotonina; recettori canale per il
glutammato; recettori canale per l?ATP. Acquaporine. Gap junctions.
Neurobiologia dell?emicrania. Fasi di un attacco emicranico:
aumenti dei trigger emicranici; attivazione dei terminali trigemino
vascolari; Infiammazione neurogenica; trasmissione dell?informazione
nocicettiva; sensibilizzazione centrale. L?emicrania emiplegica
familiare (FHM). Coinvolgimento dei canali Ca voltaggio-dipendenti di
tipo P/Q nell?FHM. Conseguenze funzionali delle mutazioni FHM.
Analisi del lavoro scientifico ? Functional Consequences of
Mutations in the Human 1A Calcium Channel Subunit Linked to Familial
Hemiplegic Migraine ? di Hans et al., 1998. Metodi di studio della
funzione dei canali ionici in sistemi di espressione. Conseguenze
funzionali delle mutazioni FHMI a livelloo di singolo canale.
Analisi del lavoro scientifico ? Familial hemiplegic migraine
mutations increase Ca2+ influx through single human CaV2.1 channels and
decrease maximal CaV2.1 current density in neurons ? di Tottene et al.,
2002.
Analisi del lavoro scientifico ? A Cacna1a Knockin Migraine Mouse Model with Increased Susceptibility
to Cortical Spreading Depression? di van den Maadenberg et al., 2004. FHMI, eccitabilita? corticale e trasmissione sinaptica.
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Modalità di Esame:
Esame orale
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Orario di Ricevimento:
venerdi' 15.00 - 17.00
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Testi Consigliati:
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Fisiologia, Patologia ed Epidemiologia - Fisiologia, Patologia ed Epidemiologia Mod 1 |
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(Docente:
Prof.
GIANFRANCESCHI
Luigi)
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Periodo didattico:
II semestre
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Programma:
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Modalità di Esame:
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Orario di Ricevimento:
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Testi Consigliati:
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Fisiologia, Patologia ed Epidemiologia - Fisiologia, Patologia ed Epidemiologia Mod 2 |
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(Docente:
Prof.
GRIGNANI
Francesco)
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Periodo didattico:
II semestre
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Programma:
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Modalità di Esame:
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Orario di Ricevimento:
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Testi Consigliati:
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Fisiologia, Patologia ed Epidemiologia - Fisiologia, Patologia ed Epidemiologia Mod 3 |
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(Docente:
Dott.
FABIANI
Roberto)
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Periodo didattico:
II semestre
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Programma:
I principi fondamentali dell'Epidemiologia Molecolare. Concetto di
Biomarcatore. Selezione, validazione e significato predittivo dei
Biomarcatori. Categorie di Biomarcatori di: dose interna, dose
biologicamente efficace, danno biologico precoce, alterazione
struttura-funzione, malattia conclamata e suscettibilità. L'utilizzo
dei Biomarcatori nella valutazione del rischio. Esempi di applicazione
di biomarcatori a patologie cronico-degenerative (neoplastiche e
cardiovascolari) ed evidenziazione dei meccanismi patogenetici. Ruolo
della epidemiologia molecolare nella prevenzione delle patologie
cronico-degenerative |
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Modalità di Esame:
Esame orale
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Orario di Ricevimento:
Dal lunedì al venerdì dalle 9.00 alle 13.00
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Testi Consigliati:
Materiale fornito dal docente.
-Molecular Epidemiology, principles and prectics. Schulte A.A., Perera F.P. Ed. Academic press
-Molecular Epidemiology of Chronic Diseases. Wild C., Vineis P., Garte S. Ed. Wiley
"
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Fotochimica e Fotobiologia
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(Docente:
Dott.
GENTILI
Pier Luigi)
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Periodo didattico:
II semestre
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Programma:
Nozioni generali sulla radiazione elettromagnetica e sull?interazione
luce-materia. Principi di fotofisica e fotochimica. Strumentazione:
sorgenti, monocromatori, rivelatori. Spettroscopie di assorbimento e di
emissione stazionarie e risolte nel tempo. Anisotropia di fluorescenza.
Tecniche fototermiche. Microscopia. Spettroscopie di singola molecola.
Fluorofori. Meccanismi di trasferimento di energia. Quenching di
fluorescenza. Caratteristiche della radiazione solare che giunge sul
pianeta terra ed interazione con gli esseri viventi. Fotosintesi.
Spettroscopia di azione. Fotomorfogenesi e fototropismo delle piante.
Fotomovimento dei microrganismi. Visione. Fotosensibilizzazione.
Fotobiologia della radiazione UV. Fotomedicina. Bioluminescenza |
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Modalità di Esame:
Esame: prova orale
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Orario di Ricevimento:
contattare il docente
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Testi Consigliati:
Consultare il docente
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Genetica dei Microrganismi
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(Docente:
Dott.ssa
LANFALONI
Luisa)
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Periodo didattico:
II semestre
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Propedeuticità:
no
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Programma:
I microrganismi eucariotici e procariotici.
Geni e genomi batterici; la replicazione del DNA; i repliconi batterici.
L'espressione genica nei procarioti: trascrizione, traduzione.
Codice genetico . Regolazione dell'espressione genica nei procarioti:
l'operone; regolazione positiva e negativa. Gli RNA regolatori.
Regolazione traduzionale e post-traduzionale. Sistemi globali di
regolazione. Differenziamento cellulare nei procarioti.
La ricombinazione nei batteri : ricombinazione omologa e sito specifica. La trasposizione.
Mutazione, mutagenesi e riparo del DNA.
I plasmidi batterici: struttura e funzioni.
La coiugazione batterica. Il plasmide F di Escherichia coli;
proprietà coniugative di ceppi F+ ed Hfr; i ceppi F'. Plasmidi
coniugativi diversi da F.
Genetica dell'Agrobacterium tumefaciens: trasferimento di DNA tra cellule procariotiche ed eucariotiche.
La trasformazione batterica; cellule batteriche naturalmente
competenti; penetrazione all'interno delle cellule ed eventuale
integrazione del DNA trasformante. Competenza indotta artificialmente.
Genetica dei batteriofagi. Ciclo litico e lisogeno. Fagi a doppia
elica di DNA; fagoT4; analisi fine del gene; fago lambda. Fagi a
singola elica di DNA. Fagi ad RNA. Sistemi di restrizione e
modificazione.
Trasduzione fagica generalizzata e specializzata.
I trasposoni batterici.
Gli Archei ( Archebatteri): cenni sulla biologia, sulla filogenesi,
sulla genetica e sulla evoluzione del terzo dominio dei viventi. |
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Modalità di Esame:
Esame orale
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Orario di Ricevimento:
Lunedì ore 15-18
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Testi Consigliati:
Il Gene VIII - B.Lewin - Zanichelli 2006
Molecular Genetics of Bacteria - L.Snyder and W.Chapness - III Ed - ASM Press 2007
Bacterial and Bacteriophage Genetics - E.A.Birge - V Ed - Springer 2006
Modern Microbial Genetics - U.N.Streips, R.E.Yasbin - II Ed - Wiley-Liss 2002
Allers T.,Mevarech M. Archaeal genetics-The third way, Nature Reviews. Genetics. 6:58-73 (2005)
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Genetica Molecolare - Genetica Molecolare Mod1 |
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(Docente:
Dott.ssa
LANFALONI
Luisa)
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Periodo didattico:
I semestre
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Propedeuticità:
no
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Programma:
Genetica Molecolare
1°Modulo: regolazione dell'espressione genica
Livelli di regolazione dell'espressione genica usati dagli organismi per adattarsi all'ambiente.
Regolazione dell'espressione genica nei batteri e nei batteriofagi
Meccanismi e gradi di complessità attraverso cui si attua la
regolazione nei batteri. L'operone: operoni inducibili e reprimibili.
Controllo positivo e negativo. Regolazione da parte degli RNA nei
batteri. Regoloni. Regolazione dei cicli vitali dei fagi.
Regolazione dell'espressione genica negli eucarioti
Struttura ed espressione dei geni eucariotici. Cromatina e
cromosomi; struttura della cromatina e regolazione genica; imprinting;
effetti epigenetici.
Regolazione alla trascrizione: promotori e polimerasi; splicing e
splicing alternativo; editing; RNA inteference: origine e funzione di
miRNAs e siRNAs. Regolazione traduzionale e post- traduzionale.
Regolazione per riarrangiamento del DNA: cambiamento del tipo di
accoppiamento in Saccharomyces cerevisiae; variazione antigenica in
Trypanosoma brucei.
Immunogenetica.
Regolazione dell'espressione genica durante lo sviluppo
Strategie di regolazione dell'espressione genica differenziale;
come si attua l'organizzazione del piano del corpo; alcuni esempi di
regolazione durante lo sviluppo embrionale: Caenorhabditis
elegans,Xenopus laevis,Drosophila melanogater,
Mus musculus.
Lo sviluppo nei vegetali.
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Modalità di Esame:
Esame
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Orario di Ricevimento:
Lunedì ore 15-18
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Testi Consigliati:
Il Gene VIII - B.Lewin - Zanichelli 2006
Biologia Molecolare della Cellula -B.Alberts et al -IV Ed. - Zanichelli 2005
Biologia Molecolare del Gene - J.D.Watson et al - V Ed. - Zanichelli 2004
Molecular Biology of the Gene- J.D.Watson et al- VI Ed.- Pearson International Publisher 2008
Genetica Molecolare - R.Knippers - Zanichelli 1998
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Genetica Molecolare - Genetica Molecolare Mod2 |
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(Docente:
Dott.ssa
MICHELI
Maria Rita)
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Periodo didattico:
I semestre
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Programma:
Patologie monogeniche. Patologie autosomiche recessive, autosomiche
dominanti, associate al cromosoma X. Identificazione dei geni
responsabili (mappatura, strategie di clonaggio). Identificazione delle
mutazioni patogenetiche. Correlazioni genotipo-fenotipo. Diagnosi
molecolare.
Anomalie cromosomiche. Citogenetica classica e citogenetica
molecolare. Sindromi dovute ad anomalie del numero o della struttura
dei cromosomi.
Sindromi correlate all?imprinting genomico.
Patologie dovute ad espansione di ripetizioni di trinucleotidi.
Patologie complesse. Mappatura e identificazione dei geni di suscettibilità.
Patologie mitocondriali. Modalità di trasmissione. Basi biochimiche e molecolari.
Patologie neoplastiche. Geni coinvolti nella trasformazione
neoplastica. Modificazioni epigenetiche. Cancerogenesi come processo a
più tappe. Instabilità genetica: MIN e CIN. Instabilità genetica e
selezione clonale. Molecular profiling.
Creazione di modelli animali per le patologie genetiche.
Principi della farmacogenomica e della terapia genica.
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Modalità di Esame:
Esame
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Orario di Ricevimento:
lunedì 15-17
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Testi Consigliati:
B.R. Korf. Genetica Umana. Dal problema clinico ai principi fondamentali. Springer-Verlag Italia, Milano 2001.
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Immunologia
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(Docente:
Dott.ssa
NERI
Mariella)
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Periodo didattico:
I semestre
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Programma:
Programma
Emopoiesi. Organi linfoidi. Cellule implicate nelle risposte
immuni. Geni ed antigeni HLA. Processazione degli antigeni esogeni ed
endogeni. Risposta umorale: genetica, sintesi e variabilità delle
immunoglobuline. LTH. Principali citochine. Cinetica della sintesi
degli anticorpi. Anticorpi monoclonali. Risposte cellulo-mediate: L.T.
citotossici, Natural Killer, Macrofagi ed Eosinofili. Regolazione
risposte immuni. Complemento: vie di attivazione e funzioni. Reazioni
di ipersensibilità. Tolleranza immunologica. Perdita della
self-tolleranza. Malattie autoimmuni. Trapianti. Rigetto di
allotrapianti. Tumori: immunità antitumorale ed immunoterapia.
Immunodeficienze |
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Modalità di Esame:
Esami orali
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Orario di Ricevimento:
Lunedì-Venerdì ore 11-13
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Testi Consigliati:
R.A. Goldsby et al., Kuby Immunologia, UTET ed, 2001
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Microbiologia Molecolare Applicata
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(Docente:
Dott.
FEDERICI
Ermanno)
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Periodo didattico:
II semestre
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Programma:
L'obiettivo del Corso è quello di approfondire gli aspetti molecolari
della Microbiologia Generale e di introdurre tematiche di Microbiologia
Applicata. Nella prima parte saranno affrontati gli aspetti
evoluzionistici e genomici della diversità microbica con particolare
riferimento alla microbiologia clinica e all'ecologia microbica. La
parte centrale del corso verrà poi dedicata alla presentazione delle
nuove metodiche molecolari utilizzate nello studio dei microrganismi di
interesse medico e ambientale. Nella parte finale del corso verranno
presentate e discusse le applicazioni industriali e biotecnologiche dei
microrganismi.
Parte I: La diversità microbica. I microrganismi nei diversi
comparti ambientali; Interazioni uomo-microrganismi: commensalismo e
patogenicità; La diversità metabolica e l'adattamento all'ambiente;
Aspetti genomici dell'evoluzione microbica.
Parte II: I metodi della microbiologia molecolare. Microrganismi
coltivabili e non coltivabili; Microbiologia tradizionale e molecolare;
Isolamento dei microrganismi dall'ambiente e da campioni clinici;
Caratterizzazione tassonomica molecolare dei microrganismi; Metodi
molecolari per lo studio delle comunità microbiche e delle loro
attività funzionali; Metagenomica e meteproteomica; Tecniche molecolari
applicate alla microbiologia clinica e alla diagnostica.
Parte III: La microbiologia industriale e le biotecnologie
microbiche. I microrganismi di interesse industriale e biotecnologico;
Screening e miglioramento dei ceppi; Fermentatori e bioreattori;
Scale-up e ottimizzazione dei processi industriali; Metaboliti primari
e secondari; Biotrasformazioni; Proteine ricombinanti e vaccini;
Biotecnologie ambientali; Biosicurezza e bioterrorismo. |
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Modalità di Esame:
esame
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Orario di Ricevimento:
contattare il docente
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Testi Consigliati:
Brock, Biologia dei Microrganismi vol. 2A.
Testi integrativi: Barbieri, Microbiologia ambientale ed elementi
di ecologia microbica; Madsen, Environmental Microbiology: From Genomes
to Biogeochemistry.
Durante le lezioni sarà inoltre distribuito materiale integrativo
(articoli e rassegne) per l'approfondimento di tematiche specifiche.
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Modelli Matematici e Statistici
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(Docente:
Dott.ssa
SALVATORI
Maria Cesarina)
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Periodo didattico:
II semestre
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Programma:
Equazioni alle derivate ordinarie del primo ordine e a variabili
separabili. Matrici: matrici quadrate, determinante e autovalori.
Sistemi di equazioni ordinarie del primo ordine lineari e metodi di
risoluzione. sistemi di equazioni ordinarie del primo ordine non
lineari e analisi qualitativa delle soluzioni. Modelli di dinamica di
popolazioni con particolare riferimento a: equazione logistica, modello
anticorpi e batteri, modello Volterra -Lotka, modelli SIR, SIRS e SI.
Esercitazioni in laboratorio con uso del pacchetto applicativo Matlab. |
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Modalità di Esame:
Colloquio.
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Orario di Ricevimento:
lunedi`ore 11-13
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Testi Consigliati:
G.Prodi -Metodi Matematici e Statistici- McGraw-Hill
eS.Invernizzi, M.Rinaldi, A.Sgarro-moduli di matematica e Statistica- Zanichelli
Giusepp Gaeta Modelli matematici in Biologia- Springer.
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Neurobiologia
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(Docente:
Dott.ssa
CASTIGLI
Emilia)
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Periodo didattico:
I semestre
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Programma:
Tipi cellulari nel sistema nervoso. Tecniche di studio del sistema
nervoso. Identificazione dei tipi cellulari gliali: cenni storici.
Astrociti e loro funzioni. Gliosi. Microglia: funzioni e origine
embrionale. Barriera emato-encefalica. Morte neuronale. Neurotrofine.
Progenitori gliali. Fattori di crescita. Sviluppo del sistema nervoso.
Neurogenesi nell'adulto. Plasticità sinaptica: meccanismi molecolari in
invertebrati e nell'ippocampo |
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Modalità di Esame:
Esami teorici
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Orario di Ricevimento:
Mercoledì ore 17-19
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Testi Consigliati:
Articoli scientifici forniti dal docente
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Principi di genomica umana
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(Docente:
Dott.ssa
MICHELI
Maria Rita)
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Periodo didattico:
II semestre
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Propedeuticità:
Genetica Molecolare
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Programma:
Genomica funzionale
Analisi del trascrittoma: Transcript cataloging (metodi
informatici, EST, ORESTES, SAGE, MPSS) ? Transcript profiling
(Microarrays) ? Transcript regulatory networking (ChIP-on-Chip)
L?inattivazione genica come strumento per la genomica funzionale: tecnologia dell?antisenso ? RNA interference
Modificazioni epigenetiche
Analisi del profilo di metilazione del DNA genomico
Variazioni interindividuali
Analisi degli SNP: Identificazione e verifica - Genotipizzazione
Applicazioni della genomica allo studio e al trattamento delle patologie neoplastiche
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Modalità di Esame:
Esame
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Orario di Ricevimento:
lunedì 15-17
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Testi Consigliati:
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Virologia molecolare e clinica
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(Docente:
Prof.ssa
IORIO
Anna Maria)
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Periodo didattico:
I semestre
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Propedeuticità:
Non esiste
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Programma:
Caratteristiche generali dei virus e classificazione . Replicazione dei
virus: fasi della replicazione e suddivisione dei virus in classi in
base alle caratteristiche della sintesi delle macromolecole virali.
Agenti subvirali : satelliti, viroidi e prioni ( caratteristiche,
modalità di replicazione, patologie indotte). Il processo infettivo (
le infezioni acute e persistenti, i meccanismi patogenetici con
particolare riferimento alle famiglie di virus in grado di dare
infezione nell?uomo). Virus e tumori ( virus oncogeni a RNA e a DNA.
Meccanismi di induzione dei tumori. Oncogeni e geni oncorepressori). Il
controllo delle infezioni virali : a) meccanismi difensivi immunitari
dell?ospite e il sistema interferon; b) i vacccini nei confronti dei
virus; c) farmaci antivirali: Caratteristiche delle famiglie dei virus
che più comunemente danno infezione nell? uomo.
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Modalità di Esame:
Esame orale
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Orario di Ricevimento:
Lunedì, Martedì, Mercoledì, Giovedì ore 11/13
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Testi Consigliati:
1) Principi di Virologia Medica. A cura di Guido Antonelli e Massimo Clementi. Casa Editrice Ambrosiana
2) Alan J. Can . Elementi di Virologia Molecolare. Casa Editrice Ambrosiana
3) La Plava M. Principi di Microbiologia M;edica. XI Edizione. Società Editrice Esculapio
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RECAPITI DEI DOCENTI |
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Dott.
ARCURI
Cataldo
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carcuri@unipg.it |
7449 |
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Dott.ssa
CASTIGLI
Emilia
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castigli@unipg.it |
5755 |
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Dott.
CATACUZZENO
Luigi
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luigi.catacuzzeno@unipg.it |
5750 |
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Prof.
CIROTTO
Carlo
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cirotto@unipg.it |
5749-5701 |
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Prof.
DONATO
Rosario Francesco
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donato@unipg.it |
7453 |
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Dott.
FABIANI
Roberto
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fabirob@unipg.it |
7336 |
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Dott.ssa
FALZETTI
Franca
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frafalz@unipg.it |
0755783185 |
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Dott.
FEDERICI
Ermanno
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ermanno.federici@unipg.it |
7414-7334 |
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Dott.
GENTILI
Pier Luigi
|
pierluigigentili@gmail.com |
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Prof.
GRIGNANI
Francesco
|
fragrig@unipg.it |
0755726264 |
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Prof.ssa
IORIO
Anna Maria
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anna@unipg.it |
7313 |
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Dott.ssa
LANFALONI
Luisa
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lanfa@unipg.it |
5753 |
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Prof.ssa
LATTERINI
Loredana
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loredana@unipg.it |
5636 |
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Dott.ssa
MARTINO
Sabata
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Dott.ssa
MICHELI
Maria Rita
|
marita@unipg.it |
5758-5757 |
|
Prof.
MINCIGRUCCI
Gianfranco
|
minci@unipg.it |
6418 |
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Dott.ssa
NERI
Mariella
|
dipigvir@unipg.it |
7304 |
|
Prof.
ORLACCHIO
Aldo
|
orly@unipg.it |
2187 |
|
Dott.ssa
SACCARDI
Carla
|
saccardi@unipg.it |
7444 |
|
Dott.ssa
SALVATORI
Maria Cesarina
|
salva@dipmat.unipg.it |
5064 |
|
Dott.ssa
TANCINI
Brunella
|
brunellatancini@virgilio.it |
7439 |
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